Упрощенная HTML-версия
16
В литературе накопились данные, позволяющие сопоставить результаты диагностики
гиперчувствительности замедленного типа к туберкулину в реакциях
in vitro
. Одно из
первых исследований в этом направлении принадлежит М.М. Авербаху и соавт. (1970). В
период обострения процесса выявляется наибольшая выраженность всех тестов с
туберкулином, наименьшая – при его затихании. При этом всеми авторами отмечается
высокая чувствительность и специфичность данных реакций. Так по данным А.В. Кочкина
(1990) и И.А. Сиренко (2001) частота повышенных значений ППН с туберкулином у больных
локальным туберкулезом составила 60,8–77%, НСТ с туберкулином 52,8%, а при первичном
инфицировании повышение показателей отмечалось реже: у 30,6–47% и 35%,
соответственно. По данным исследований Н.А.Гнусарева с соавт. (2001) РТМЛ с
туберкулином оказалась положительной у 44% больных с легочной локализацией
туберкулезного процесса. Freour с соавт. (1972) и И.А. Сиренко (2001) установили, что РБТЛ
с туберкулином положительна в 51–63% случаев у туберкулинположительных здоровых лиц
и в 93–94% случаев – у больных туберкулезом.
По данным Р.И. Шендеровой и Н.М. Чужовой (2000) усиление РТМЛ при туберкулезе
часто совпадает с прогрессированием процесса, увеличение РБТЛ, напротив – с повышением
защитных сил организма. Угнетение клеточного иммунного ответа выражается в снижении
количества и (или) пролиферативной активности Т-лимфоцитов и подавлении продукции
ими различных медиаторов. Антигенная стимуляция приводит также к изменению
интенсивности синтеза иммуноглобулинов, следовательно, и специфических антител, и
функциональной активности фагоцитирующих клеток.
При хроническом течении туберкулезного процесса угнетение иммунной системы
носит постоянный характер и проявляется в дисбалансе нормального соотношения между
субпопуляциями Т-лимфоцитов. Подавление Т-хелперного звена иммунитета, обычно при
помощи ИЛ-2, включающего опосредованно, через В-клетки, пролиферацию плазмотических
клеток, а также угнетение продукции ИЛ-4,5,10 Th2 находит свое отражение в нарушении
баланса иммуноглобулинов всех классов. В этот момент в сыворотке крови больных могут
вовсе отсутствовать или определяться в низких титрах специфические антитела.
Иммуноферментный анализ (ИФА).
В методах ИФА используют иммунореагенты,
меченные ферментами. Наиболее широко применяется твердофазный ИФА. В качестве
твердой фазы чаще используют полистироловые или поливиниловые планшеты или шарики,
на которых адсорбированы антигены или антитела. Для выявления антител известный
антиген адсорбируют в лунках полистироловой пластины. Затем вносят исследуемую
сыворотку, в которой хотят обнаружить антитела к данному агенту. После инкубации лунки
промывают для удаления несвязавшихся белков и вносят в них антииммуноглобулиновые
антитела, меченные ферментом (обычно пероксидазой). После инкубации и отмывания в
лунки добавляют специфичный для фермента субстрат (перекись водорода) и хромоген
(орто-фенилендиамин) для регистрации конечных продуктов расщепления субстрата. О
наличии и количестве антител судят по изменению цвета и интенсивности окраски раствора.
Используя твердофазные носители с антигенами выявляют антитела к различным видам
бактерий, вирусов, простейших (Д.К. Новиков с соавт., 1996).
В диагностике туберкулеза серологические методы, в том числе ИФА, не оправдали
всех возлагавшихся надежд, поскольку не удалось обнаружить специфичных антигенов
M.tuberculosis, на которые у большинства больных вырабатываются соответствующие
антитела. Существующие иммуноферментные тест-системы обладают специфичностью на
уровне 90–94% (6–10% ложноположительных результатов у здоровых лиц или больных
нетуберкулезными заболеваниями), тогда как чувствительность (число положительных
результатов у больных активным туберкулезом) составляет, в среднем, около 70%. Поэтому
говорить о самостоятельном значении данного метода для дифференциальной диагностики
туберкулеза органов дыхания пока не представляется возможным. Чувствительность ИФА
при туберкулезе составляет 60–70%, а специфичность около 90% (Приказ МЗ РФ № 109 от