Упрощенная HTML-версия
57
данные факты трудно говорить о диагностической значимости
уровня сывороточного ИФН-
при оценке активности туберку-
лезной инфекции.
В отличие от сывороточного уровня ИФН-
количество Т-
лимфоцитов, содержащих внутриклеточный ИФН-
, у больных
туберкулезом повышено по сравнению со здоровыми донорами и
носителями латентной инфекции (H. Veenstra, I. Crous,
S. Brahmbhatt et al., 2007). Данные о высоком содержании ИФН-
-
продуцирующих лимфоцитов у больных активным туберкулезом
позволяют считать, что количество ИФН-
-продуцирующих кле-
ток может являться мерой микобактериальной нагрузки и ис-
пользоваться для диагностики туберкулеза. Новые подходы к ди-
агностике латентного и активного туберкулеза основаны именно
на определении количества (частоты) клеток, продуцирующих
ИФН-
(тест T-SPOT), и / или количества ИФН-
, продуцируемо-
го клетками периферической крови после их стимуляции in vitro
антигенами M.tuberculosis
(Quantiferon Gold) (A. Lalvani,
K.A. Millington, 2008; M. Pai, A. Zwerling, D. Menzies, 2008;
G. Ferrara, M. Losi et al., 2005; G. Ferrara, M. Losi et al., 2006),
при постановке реакции рекомендуется короткое время экспо-
зиции – 24 часа, поэтому тест в основном используется как
скрининговый при отборе для более детального обследования
на туберкулез, что не исключает получения ложноотрицатель-
ных результатов. В отечественной практике данные тесты не
используются (В.И. Киселев с соавт., 2008), поэтому оценить
чувствительность и специфичность данных тестов не возможно.
Полимеразная цепная реакция (ПЦР).
ПЦР относится к
молекулярно-генетическим методам исследования и в настоящее
время широко используется для обнаружения M.tuberculosis (от-
ражает факт наличия или отсутствия антигена). Принцип метода
состоит в циклическом повторении трех стадий реакции:
1)
денатурации ДНК при нагревании;
2)
гибридизации искусственно синтезированных олигонуклео-
тидов с фланговыми участками цепей амплифицируемого
фрагмента ДНК (так называемых «праймеров» или «затра-
вочных» фрагментов);