Упрощенная HTML-версия
Вторичный туберкулез.
Вторичный туберкулезный процесс – реактивация
возбудителя в результате ослабления резистентности наблюдается при стрессах, нарушениях
питания и у лиц пожилого возраста. Возникают очаги казеозного распада в легких с
образованием полостей, поражение бронхов, мелких кровеносных сосудов.
Иммунитет. В основе нестерильного инфекционного и вакцинального иммунитета при
туберкулезе – клеточный иммунитет в виде гиперчувствительности замедленного типа (ГЗТ),
опосредуемой Т-лимфоцитами и макрофагами. Т-лимфоциты при участии белков главной
системы гистосовместимости класса I распознают клетки, инфицированные микобактериями
туберкулеза, атакуют и разрушают их. Антибактериальные антитела связываются с
различными антигенами возбудителя, образуют циркулирующие иммунные комплексы
(ЦИК) и способствуют их удалению из организма.
Аллергическая перестройка (ГЗТ) к туберкулезной палочке свидетельствует о
формировании приобретенного иммунитета и может быть выявлена с помощью
туберкулиновой пробы. Эта проба является достаточно специфичной. Старый туберкулин
Коха представляет концентрированный фильтрат стерилизованных компонентов
микобактерий. Очищенный препарат PPD (новый туберкулин Коха, содержащий
туберкулопротеины) используют преимущественно для постановки
внутрикожной пробы
Манту
. С помощью этой пробы проводят отбор лиц, подлежащих ревакцинации.
Положительный результат пробы Манту нельзя рассматривать как обязательный признак
активного процесса (это на самом деле показатель ГЗТ), а отрицательный – не всегда
свидетельствует об его отсутствии (анергия, иммунодефициты).
Иммунопрофилактика включает внутрикожное введение аттенуированного штамма
B.bovis, известного как бацилла Кальметта-Жерена (БЦЖ). В России вакцинацию проводят
новорожденным (на 5-7 дни жизни), ревакцинацию – в 7-12-17-22 лет и более старших
возрастах при отрицательной пробе Манту (т.е. отсутствии клеточного нестерильного =
вакцинального или инфекционного иммунитета – ГЗТ).
Лабораторная диагностика. Применяют микроскопические, бактериологические,
биологические, аллергологические, серологические и молекулярно-генетические методы.
Микроскопическая диагностика
включает микроскопию нативного материала,
использование методов накопления, люминесцентную диагностику.
Микроскопия нативного
патологического материала
(мокрота, отделяемое свищей, промывные воды из бронхов,
моча) в мазках, окрашенных по Цилю-Нильсену, позволяет выявлять красные
кислотоустойчивые палочки при концентрации микобактерий не менее нескольких сотен
тысяч в мл.
Методы накопления
(например, флотации) повышают чувствительность
микроскопии до нескольких тысяч микробных тел/мл.
Люминесцентная микроскопия
с
использованием акридинового оранжевого или аурамина-родамина – наиболее
чувствительный и эффективный метод бактериоскопии, чувствительность – 500-1000
микобактерий/мл. Позволяет выявлять микобактерии с измененными культуральными и
тинкториальными свойствами.
Бактериологический метод
(посев на питательные среды) позволяет обнаружить
микобактерии при концентрации 200-300 /мл. Метод наиболее эффективен до или в начале
лечения, в конце лечения уступает по эффективности люминесцентному методу. Недостаток
– длительность получения результатов – от 2 до 12 недель. Достоинство – возможность
оценки вирулентности культуры, определение чувствительности к лекарственным
препаратам. Разработаны ускоренные методы выделения. По методу Прайса материал
помещают на предметное стекло, обрабатывают серной кислотой, отмывают
физиологическим раствором и вносят в питательную среду с цитратной кровью. Стекло
вынимают через 3-4 суток и окрашивают по Цилю-Нильсену.