расстройствах микроциркуляции и развитии эндотоксемии при критических
состояниях, обусловленных абдоминальным сепсисом и тяжелой механической
травмой.
Материал и методы. Эксперименты проведены на белых крысах-самцах
в возрасте 5-6 месяцев через 10-12 часов после еды при свободном доступе к воде.
В первой серии опытовдля формирования вторичного иммунодефицита 40 крысам
массой 222±14 г вводили преднизолон в дозе 25 мг/кг в течение 16 суток. После
иммуносупрессии крыс инфицировали живой культурой Pseudomonas aeruginosa
путем внутрибрюшинного введения 2,5 мл взвеси в дозе 3x109по оптическому
стандарту мутности МакФарланда. Спустя 3 часа от момента введения живой
культуры крыс выводили из эксперимента путем наркотизации этиловым эфиром.
У всех крыс моделировали синегнойный перитонит. В первой группе опытов (п=10)
с целью связывания Fe2+ за 2 часа до введения живой культуры Ps. aeruginosa
вводили дефероксамин из расчета 80 мг/кг в 5 мл физиологического раствора, а
во второй группе (п=10) - плацебо (5 мл физиологического раствора). Животным
третьей группы (п=10) вводили только культуру синегнойной палочки в дозе 3x109
по оптическому стандарту мутности Мак Фарланда. Контрольную группу
составили 10 интактных иммунизированных животных.
Во второй серии опытов использовано 40 крыс-самцов массой 208±20 г.
Животных наркотизировали эфиром до достижения хирургической стадии
обезболивания и производили перелом двух бедренных костей. В результате
нанесенной травмы отмечено формирование большой межмышечной гематомы и
нарушение целостности диафиза бедренной кости. Во второй группе (10
животных) предварительно за 2 часа до нанесения травмы в брюшную полость
вводился дефероксамин в дозе 80 мг/кг в 5 мл физиологического раствора. В
третьей группе (10 животных) травма была нанесена с предварительным (за 2
часа до травмы) забрюшинным введением плацебо (5 мл физиологический
раствор). 10 животных составили четвертую группу (контроль). Исследовали
концентрацию сывороточного железа с помощью набора реактивов компании
«ДИАСИС» (Германия) на биохимическом анализаторе «Марс», трансферрина -
иммунотурбидиметрическим методом на автоматическом биохимическом
анализаторе «Копе1аЬ-20», используя реактивы фирмы «SENTINEL» (Италия),
ферритина с помощью иммуноферментного теста UBI MAGIWEL Ferritin
(Франция). Через 3 часа после моделирования критического состояния животным
проводили срединную лапаротомию и осматривали брюшинную полость и
внутренние органы на предмет возможных визуальных изменений. После этого
катетеризировали воротную вену и производили забор крови для определения
концентрации ВНСММ и олигопептидов. Содержание ВНСММ исследовалось
отдельно в плазме и на эритроцитах крови воротной вены по методике М.Я.
Малаховой. Содержание олигопептидов в плазме крови животных определяли по
методике O.N. Lowry. Вязкость крови определяли на программируемом
вискозиметре Brookfield DV-II+Pro при разных скоростях сдвига. Статистическую
обработку полученных результатов проводили с использованием параметрических
и непараметрических критериев (Манна-Уитни), пакета прикладных программ
71