Упрощенная HTML-версия
14
проводилось с помощью ПЦР с праймерами, фланкирующими полиморфный
регион в пределах 2-го интрона, в котором находилось вариабельное
количество тандемных повторов. Анализ полиморфных локусов генов ИЛ-1β и
ИЛ-1RN осуществлялся методом ПЦР в стандартных условиях на
амплификаторе «Терцик» («ДНК-Технология», г. Москва) согласно
общепринятой методике исследования (В.И. Коненков, 2003).
Исследование полиморфизма генов
ФНО-α (-308) G→A и CD14 (-260) C→T
Анализ полиморфных локусов указанных генов осуществлялся с помощью
метода ПЦР в стандартных условиях на амплификаторе «Терцик» («ДНК-
Технология», г. Москва).
Статистические методы исследования.
Размер выборки пациентов,
минимально достаточный для получения доказательных данных, рассчитывался
по формуле Лера для мощности 80% и двустороннего уровня значимости 0,05
(А. Петри, 2003; В.И. Юнкеров, 2002):
16
N = ---------------------------------------------;
(стандартизированная разность)
2
В процессе статистической обработки данных применялись методы
описательной статистики; для сравнения двух независимых групп – критерий
Манна-Уитни; трех независимых групп – критерий Краскела-Уоллиса; для
оценки значимости различий в группах, имеющих качественные переменные,
использовался хи-квадрат (χ
2
) и точный критерий Фишера. Соответствие
наблюдаемых распределений частот генотипов, теоретически ожидаемых по
закону Харди-Вайнберга, оценивалось по критерию χ
2
с помощью
компьютерной программы SPSS 11.5 for Windows. Сила ассоциации
оценивалась в значениях показателей отношения шансов (ОШ) по формуле:
ОШ = (ad) / (bc); где:
а
и
b
– число больных с наличием/отсутствием данного
генотипа, соответственно;
с
и
d
– число здоровых лиц с наличием/отсутствием
данного генотипа.